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    如何才能把細(xì)胞培養(yǎng)好?

    發(fā)布時(shí)間: 2022-11-01  點(diǎn)擊次數(shù): 1645次


    一、細(xì)胞培養(yǎng)的基本概念

    (1)基本概念


    細(xì)胞培養(yǎng):狹義的細(xì)胞培養(yǎng)主要是指分離(散)細(xì)胞培養(yǎng),廣義的細(xì)胞培養(yǎng)還包括單(個(gè))細(xì)胞培養(yǎng)又稱克?。╟lone),是指單個(gè)細(xì)胞通過有絲分裂形成的細(xì)胞群體。一個(gè)細(xì)胞克隆中的所有細(xì)胞均來源于同一個(gè)祖先細(xì)胞。

     

    原代培養(yǎng):即第一次培養(yǎng),指將培養(yǎng)物放在體外生長環(huán)境中持續(xù)培養(yǎng),中途不分割培養(yǎng)物的培養(yǎng)過程。

     

    傳代:原代培養(yǎng)成功后,隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長和細(xì)胞不斷分裂,一則細(xì)胞之間相互接觸發(fā)生接觸性抑制,生長速度減慢甚至停止;另一方面因營養(yǎng)物不足和代謝物積累不利于生長或發(fā)生中毒。需要將培養(yǎng)物分割成小的部分,重新接種到另外的培養(yǎng)器皿(瓶)內(nèi),再進(jìn)行培養(yǎng)。這個(gè)過程稱為傳代或者再培養(yǎng)。

     

    細(xì)胞系:原代培養(yǎng)物經(jīng)首傳代成功后,即成細(xì)胞系。如細(xì)胞系不能繼續(xù)傳代或傳代數(shù)有限,稱為有限細(xì)胞系,它由原代培養(yǎng)中的許多細(xì)胞系列組成。如細(xì)胞系可連續(xù)傳代,則稱為連續(xù)細(xì)胞系,即已建成的細(xì)胞系。

     

    細(xì)胞株:通過篩選或克隆化,且有特殊性質(zhì)或特異標(biāo)記的細(xì)胞。這些特性在以后的培養(yǎng)中必須持續(xù)存在。這些特性包括具有一定的標(biāo)記染色體,對某種病毒的敏感性或抗性及具有特殊的抗原性等。 



    二、細(xì)胞的生長

    (1)生長方式

     

    貼附生長:必須貼附于支持物表面才能生長。

    懸浮生長:于懸浮狀態(tài)下即可生長,不需要貼附于支持物表面。



    (2)生長過程


    游離期:細(xì)胞接種后在培養(yǎng)液中呈懸浮狀態(tài),也稱懸浮期。此時(shí)細(xì)胞質(zhì)回縮,胞體呈圓球形。10min-4h。


    貼壁期:細(xì)胞附著于底物上,游離期結(jié)束。細(xì)胞株平均在10min-4h貼壁。底物:膠原、玻璃、塑料、其它細(xì)胞等血清中有促使細(xì)胞貼壁的冷析球蛋白和纖粘素、膠原等糖蛋白(生長基質(zhì)),這些帶正電荷的糖蛋白的促貼壁因子先吸附于底物上,懸浮細(xì)胞再與吸附有促貼壁因子的附著。進(jìn)口塑料培養(yǎng)瓶涂有生長基質(zhì)(化學(xué)合成的功能基團(tuán))。


    潛伏期:此時(shí)細(xì)胞有生長話動(dòng),而無細(xì)胞分裂。細(xì)胞株潛伏期般為6~24小時(shí)。


    對數(shù)生長期:細(xì)胞數(shù)隨時(shí)間變化成倍增長,活力最佳,最為適合進(jìn)行實(shí)驗(yàn)研究。


    停止期(平臺期):細(xì)胞長滿瓶壁后,細(xì)胞雖有活力但不再分裂,機(jī)制:接觸抑制、密度依賴性。


    (3)生長條件

    細(xì)胞的營養(yǎng)需,細(xì)胞的生存環(huán)境,溫度:37℃,O2,CO2:5%,pH:7.2-7.4,滲透壓,無污染,無毒。




    三、常用的器材與試劑

    (1)常用儀器

    超凈工作臺:為細(xì)胞操作提供無菌環(huán)境。紫外燈:紫外線消毒。主要用于培養(yǎng)室空氣、操作臺、塑料培養(yǎng)皿和培養(yǎng)板等表面消毒。


    濾器:過濾除菌:大多數(shù)培養(yǎng)用液,如人工合成培養(yǎng)基、血清、酶液等均采用濾過法除菌。



    電熱干燥箱:干熱消毒(160℃,2h)。主要用干玻璃器皿消毒。


    壓力蒸汽消毒器:濕熱消毒,用途廣。


    CO2培養(yǎng)箱:CO2培養(yǎng)箱設(shè)定的條件:37℃,5%CO2。使用CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)細(xì)胞時(shí)應(yīng)注意的問題:


    ①用螺旋口瓶培養(yǎng)細(xì)胞時(shí),需將瓶蓋微松,以保證通氣。

    ②保持培養(yǎng)箱內(nèi)空氣干凈。定期消毒(90℃,14h)。

    ③箱內(nèi)火菌蒸餾水 3000ml 蒸餾水槽中以保持箱內(nèi)濕度,避兔培養(yǎng)液蒸發(fā)。

     

    其它儀器:倒置顯微鏡,酶標(biāo)儀,微孔板震蕩器,液氮罐,自動(dòng)雙重純水蒸餾器,純水儀等。


    (2)常用耗材


    耗材:培養(yǎng)瓶,吸管,培養(yǎng)板,凍存管,酒精燈


    (3)常用試劑

    • 消化液

    胰蛋白酶:是一種黃白色粉末,用無Ca2+、Mg2+的PBS緩沖液配制,常用的胰蛋白酶液濃度是0.25%。用濾器過濾除菌,如經(jīng)費(fèi)充??梢灾苯淤徺I已經(jīng)配制好的胰酶,無需自己配制。


    胰蛋白酶作用機(jī)制:胰蛋白酶作用于與賴氨酸或精氨酸相連接的肽健,除去細(xì)胞間粘蛋白及糖蛋白,影響細(xì)胞骨架,從而使細(xì)胞分離。胰蛋白酶液濃度越高,作用越強(qiáng),但超過一定限度會(huì)損傷細(xì)胞。


    胰蛋白酶液消化時(shí)間:2-10 min。可用含血清培養(yǎng)液終止其對細(xì)胞的消化作用。


    • 培養(yǎng)基

    培養(yǎng)基(培養(yǎng)液):是維持體外細(xì)胞生存和生長的溶液,分天然培養(yǎng)基和合成培養(yǎng)基。


    天然培養(yǎng)基:天然培養(yǎng)基有血清、血漿、和組織提取液(如雞胚和牛胚浸液)。優(yōu)點(diǎn):營養(yǎng)成分豐富,培養(yǎng)效果好。缺點(diǎn):來源受限。成分復(fù)雜,影響對某些實(shí)驗(yàn)產(chǎn)物的提取和實(shí)驗(yàn)結(jié)果的分析。易發(fā)生支原體污染。


    合成培養(yǎng)基:合成培養(yǎng)基是根據(jù)細(xì)胞生存所需物質(zhì)的種類和數(shù)量,用人工方法模擬合成的。目前已設(shè)計(jì)出許多種培養(yǎng)基,如TC199、MEM、RPMI-1640、DMEM等。主要成分:氨基酸、維生素、碳水化合物、無機(jī)鹽和其它一些輔助物質(zhì)。優(yōu)點(diǎn):標(biāo)準(zhǔn)化生產(chǎn),組分和含量相對固定,成本低。缺點(diǎn):缺少某些成分,不能全滿足體外細(xì)胞生長需要,只能維持細(xì)胞生存,要想使細(xì)胞生長和繁殖,還需補(bǔ)充一定量的天然培養(yǎng)基(如血清)。


    • 血清培養(yǎng)基

    血清中含有:①多種蛋白質(zhì)(白蛋白、球蛋白、鐵蛋白等)②多種金屬離子③激素;④促貼附物質(zhì),如纖粘蛋白、冷析球蛋白、膠原等。⑤各種生長因子⑥轉(zhuǎn)移蛋白⑦不明成分。


    常用血清:胎牛血清、新生牛血清、小牛血情、兔血清、馬血清等,其中以胎牛血清質(zhì)量為好。


    血清質(zhì)量好壞是實(shí)驗(yàn)成敗的關(guān)鍵,優(yōu)質(zhì)血清的標(biāo)準(zhǔn):透明,淡黃色,無沉淀物,無細(xì)菌、支原體、病毒污染。血清的滅活(消除補(bǔ)體活性):56℃,30min。血清的消毒:過濾除菌。


    • 抗菌素的使用

    抗生素的作用:在培養(yǎng)液配制后,培養(yǎng)液內(nèi)常加適量抗菌素,以抑制可能存在的細(xì)菌的生長。通常是青霉素和鏈霉素聯(lián)合使用。培養(yǎng)基內(nèi)青霉素、鏈霉素最終使用濃度為每毫升100單位。慶大霉素最終使用濃度為每毫升100單位,方便、廣譜、穩(wěn)定。

     

    • 完培的組成

    基礎(chǔ)培養(yǎng)基80%一95%,血清5%-20%,碳酸氫鈉2.0g/L,青、鏈霉素各100單位/毫升。



    四、細(xì)胞的傳代方式

    (1)懸浮細(xì)胞



    直接傳代法:懸浮細(xì)胞沉淀在瓶壁時(shí),將上清培養(yǎng)液去除l/2-2/3,然后用吸管直接吹打形成細(xì)胞懸液再傳代。


    離心法傳代:離心(1000 r/min)去上清,沉淀物加新培養(yǎng)液后再混勻傳代。


    (2)半懸浮細(xì)胞

    此類細(xì)胞部分呈現(xiàn)貼壁生長現(xiàn)象,但貼壁不牢,可用直接吹打法使細(xì)胞從瓶壁脫落下來,進(jìn)行傳代。


    (3)貼壁細(xì)胞

    采用酶消化法傳代,常用的消化液有0.25%的胰蛋白酶液。


    詳細(xì)步驟:

    1、吸光培養(yǎng)瓶中的培養(yǎng)基,加入1-2ml PBS清洗2-3遍,吸出PBS。

    2、加入1-2ml 0.25%的胰蛋白酶液,以消化液能覆蓋整個(gè)瓶底為準(zhǔn)。

    3、靜置2-10min(具體時(shí)間根據(jù)細(xì)胞狀態(tài)確定),顯微鏡下動(dòng)態(tài)監(jiān)測,當(dāng)細(xì)胞消化全,立即加入含血清培養(yǎng)基,終止消化。

    4、轉(zhuǎn)移至離心管,離心(800r/min,5min)。

    5、吸去胰蛋白酶液,加入培養(yǎng)液,反復(fù)吹打細(xì)胞沉淀,混勻,形成細(xì)胞懸液。

    6、吸取適量細(xì)胞懸液,接種于新的培養(yǎng)瓶內(nèi)。

    7、加適量新鮮培養(yǎng)液于接種了細(xì)胞懸液的新培養(yǎng)瓶內(nèi),然后放入培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。



    五、細(xì)胞的凍存與復(fù)蘇



    (1)凍存和復(fù)蘇的原則


    慢凍快融,當(dāng)細(xì)胞冷到0℃以下,可以產(chǎn)生以下變化:細(xì)胞器脫水,細(xì)胞中可溶性物質(zhì)濃度升高,并在細(xì)胞內(nèi)形成冰晶。如果緩慢冷凍,可使細(xì)胞逐步脫水,細(xì)胞內(nèi)不致產(chǎn)生大的冰晶;相反結(jié)晶就大,大結(jié)晶會(huì)造成細(xì)胞膜、綱胞器的損傷和破裂。復(fù)蘇過程應(yīng)快融,目的是防止小冰晶形成大冰晶,即冰晶的重結(jié)晶。


    (2)慢凍程序

    方法一:當(dāng)溫度在-25℃以上時(shí),-1~-2℃/min;當(dāng)溫度達(dá)-25℃以下時(shí),-5~-10℃/min;當(dāng)溫度達(dá)-100℃時(shí),可迅速放入液氮中細(xì)胞凍存。


    方法二:冷凍管置于已設(shè)定程序之程序降溫機(jī)中每分鐘降-1~-3℃至-80℃以下,再放入液氮長期保存。


    方法三:購買無血清快速細(xì)胞凍存液,可以省掉程序降溫的步驟,直接凍存。補(bǔ)充:一般凍存液的配置:90%血清+10%DMSO。


    (3)基低溫保護(hù)劑的應(yīng)用

    在細(xì)胞凍存時(shí)加入低溫保護(hù)劑,能大大提高凍存效果。常用的低溫保護(hù)劑是DMSO,它是一種滲透性保護(hù)劑,可迅速透入細(xì)胞,提高胞膜對水的通透性,降低冰點(diǎn),延緩凍結(jié)過程,能使細(xì)胞內(nèi)水分在凍結(jié)前透出細(xì)胞外,在胞外形成冰晶,減少胞內(nèi)冰晶,從而減少冰晶對細(xì)胞的損傷。


    (4)細(xì)胞凍存步驟

    1、預(yù)先配制凍存液:含20%血清培養(yǎng)基10%DMSO

    2、取對數(shù)生長期細(xì)胞,經(jīng)胰酶消化后,加入適量凍存液,用吸管吹打制成細(xì)胞懸液(1×106~5×106細(xì)胞/ml)

    3、加入1ml細(xì)胞于凍存管中,密封后標(biāo)記冷凍細(xì)胞名稱和冷凍日期。

    4、按照慢凍程序?qū)?xì)胞進(jìn)行凍存。


    (5)細(xì)胞復(fù)蘇步驟

    1、從液氮中取出冷凍管,迅速投入37℃水浴鍋,使其融化(1分鐘左右)。

    2、立即轉(zhuǎn)移至離心管,加入適量培養(yǎng)液。

    3、以800r/min離心5分鐘。

    4、去上清,加新鮮培養(yǎng)液,吹打混勻成細(xì)胞懸液,轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)瓶,放入培養(yǎng)箱培養(yǎng)。



    六、細(xì)胞計(jì)數(shù)

    (1)人工計(jì)數(shù)法

    吹打待測細(xì)胞懸液中細(xì)胞,使其在懸液內(nèi)分布均勻,這樣只需測定很小一部分體積的細(xì)胞懸液中的細(xì)胞數(shù)目,即可換算出每毫升細(xì)胞懸液中細(xì)胞的細(xì)胞數(shù)目。


    酒精消毒計(jì)數(shù)板:用酒精棉將細(xì)胞計(jì)數(shù)板和蓋玻片全擦拭干凈,并將蓋玻片蓋于細(xì)胞計(jì)數(shù)板上;


    轉(zhuǎn)移蓋玻片:吸取10 ul單細(xì)胞懸液,并沿著蓋玻片邊緣滴加,使細(xì)胞懸液填滿蓋玻片和計(jì)數(shù)板之間區(qū)域,注意避免產(chǎn)生氣泡,細(xì)胞懸液亦不能流入計(jì)數(shù)板的邊槽中,之后靜置3 min;


    數(shù)細(xì)胞:隨機(jī)選取計(jì)數(shù)板上其中4大格并記錄4大格中的細(xì)胞總數(shù),壓線的細(xì)胞按照數(shù)上不數(shù)下,數(shù)左不數(shù)右的原則,之后按照以下公式進(jìn)行計(jì)算:

    細(xì)胞數(shù)/mL=4大格細(xì)胞總數(shù)/4×104×稀釋倍數(shù)



    七、注意事項(xiàng)

    (1)注意事項(xiàng)

    計(jì)數(shù)前:計(jì)數(shù)前,注意吸盡培養(yǎng)皿里的細(xì)胞,充分混勻,使細(xì)胞分散成單個(gè)細(xì)胞。


    實(shí)驗(yàn)操作臺:實(shí)驗(yàn)操作應(yīng)在操作臺中央無菌區(qū)域內(nèi)進(jìn)行,勿在邊緣非無菌區(qū)域操作。


    吸管:吸取過營養(yǎng)液后的吸管不能再用火焰燒灼,因殘留在吸管頭中營養(yǎng)液能燒焦形成炭膜,再用時(shí)會(huì)把有害物帶入營養(yǎng)液中。


    手:不能用手觸及已消毒器皿瓶口、瓶塞內(nèi)部,吸管前部等所有可能與細(xì)胞接觸的部分,如已接觸,要用火焰燒灼消毒或取備品更換。


    火焰滅菌時(shí)間:開啟、關(guān)閉長有細(xì)胞的培養(yǎng)瓶時(shí),火焰滅菌時(shí)間要短。防止因溫度過高燒死細(xì)胞。


    換液:換液時(shí)傾倒廢液,瓶口不能接觸廢液缸,速度不能過快,防止廢液四濺。


    吹打細(xì)胞:吹打細(xì)胞時(shí),要注意邊角的細(xì)胞是否吹打下來。


    相對較臟的物品:手或相對較臟的物品不能經(jīng)過開放的瓶口上,即不可以在開放容器上方操作。


    交叉污染:每次操作只處理一株細(xì)胞,以免造成細(xì)胞交叉污染。


    自身的安全:注意自身的安全,對于來自人源性或病毒感染的細(xì)胞株應(yīng)特別小心。操作過程中,應(yīng)避免引起氣溶膠的產(chǎn)生,小心有毒性試劑例如DMSO,并避免尖銳物品傷人等。


    凍存:從增殖期到形成致密的單層細(xì)胞以前的培養(yǎng)細(xì)胞都可以用于凍存,但最好為對數(shù)生長期細(xì)胞。在凍存前一天最好換一次培養(yǎng)液。將凍存管放入液氮容器或從中取出時(shí),要做好防護(hù)工作,以免凍傷。凍存和復(fù)蘇最好用新配制的培養(yǎng)液。


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